Геликаза-зависимая амплификация

Материал из Википедии — свободной энциклопедии
(перенаправлено с «Геликаз-зависимая амплификация»)
Перейти к навигации Перейти к поиску

Гелика́за-зави́симая амплифика́ция (англ. helicase-dependent amplification, HDA), также гелика́за-зави́симая изотерми́ческая амплифика́ция, — это метод амплификации ДНК in vitro, который, в отличие от полимеразной цепной реакции, осуществляется при постоянной температуре.

Полимеразная цепная реакция является наиболее широко используемым методом амплификации ДНК in vitro в молекулярной биологии и биомедицинских исследованиях[1]. Этот процесс включает разделение двухцепочечной ДНК при высокой температуре на одноцепочечную (этап денатурации, обычно достигаемый при 95-97 °C), отжиг праймеров к одноцепочечной ДНК (этап отжига) и копирование одноцепочечной ДНК для создания новой двухцепочечной ДНК (этап удлинения, для которого требуется ДНК-полимераза), что требует проведения реакции в термоциклере. Эти настольные машины большие, дорогие и требуют больших затрат на эксплуатацию и обслуживание, что ограничивает применение амплификации ДНК в ситуациях вне лаборатории (например, при идентификации потенциально опасных микроорганизмов на месте расследования или при оказании помощи пациенту). Хотя ПЦР обычно ассоциируется с термоциклированием, в оригинальном патенте Mullis et al. раскрыто использование геликазы в качестве средства для денатурации двуцепочечной ДНК, что включает изотермическую амплификацию нуклеиновых кислот. В естественных условиях ДНК реплицируется ДНК-полимеразами с различными вспомогательными белками, включая ДНК-геликазы, которые разделяют цепи ДНК путём раскручивания двойной спирали ДНК[2]. Метод HDA был разработан на основе этой концепции, и использует геликазу для денатурации ДНК.

Методология

[править | править код]

Нити двухцепочечной ДНК сначала разделяются ДНК-геликазой и покрываются белками, связывающими одноцепочечную ДНК (ssDNA). На втором этапе два праймера, специфичные для конкретной последовательности, гибридизуются с каждой границей шаблона ДНК. Затем ДНК-полимераза используется для удлинения праймеров, отжигаемых на шаблонах, для получения двухцепочечной ДНК, а два вновь синтезированных продукта ДНК затем используются в качестве субстратов ДНК-геликазой, вступая в следующий раунд реакции. Таким образом, развивается одновременная цепная реакция, приводящая к экспоненциальной амплификации выбранной целевой последовательности (схему см. в Vincent et al., 2004[3]).

Преимущества и недостатки HDA

[править | править код]

С момента публикации своего открытия технология HDA используется для выявления ДНК Clostridium difficile[4]; кроме того разработан тест для выявления золотистого стафилококка[5]. Преимуществом HDA является то, что он обеспечивает возможность быстрой амплификации целевых нуклеиновых кислот при изотермических условиях и не требует использования термоциклера и, следовательно, позволяет проводить исследования в полевых условиях. Однако большая часть работы, необходимой для выявления потенциально опасных микроорганизмов, проводится в исследовательских/больничных лабораториях. Массовая диагностика по большому количеству образцов всё ещё не может быть достигнута с помощью HDA, в то время как ПЦР-реакции, проводимые в термоциклере, вмещающем многолуночные планшеты, позволяют амплифицировать целевую ДНК в десятках или даже сотнях образцов. Кроме того, реагенты для HDA, часто поставляемые в виде готовых наборов, cтоят дороже, чем стандартные реагенты для ПЦР.

Примечания

[править | править код]
  1. Saiki RK, et al. (1988). Primer-directed enzymatic amplification of DNA with a thermostable DNA polymerase. Science. 239 (4839): 487–491. doi:10.1126/science.239.4839.487. PMID 2448875.
  2. DNA Replication, 2nd edn. — WH Freeman and Company: New York, 1992. — ISBN 978-1-891389-44-3.
  3. Vincent M, Xu Y, Kong H (2004). Helicase-dependent isothermal DNA amplification. EMBO Rep. 5 (8): 795–800. doi:10.1038/sj.embor.7400200. PMC 1249482. PMID 15247927.
  4. Chow WH, McCloskey C, Tong Y, Hu L, You Q, Kelly CP, Kong H, Tang YW, Tang W (2008). Application of isothermal helicase-dependent amplification with a disposable detection device in a simple sensitive stool test for toxigenic Clostridium difficile. J Mol Diagn. 10 (5): 452–8. doi:10.2353/jmoldx.2008.080008. PMC 2518740. PMID 18669881.
  5. IsoAmp Rapid Staph Detection Kit (product description). Biohelix corp.. Архивировано из оригинала 10 октября 2009 года.
  6. United States Patent 7,972,820. July 5, 2011. Isothermal amplification of nucleic acids on a solid support